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(AD1023)Ad-mCherry-GFP-LC3

产品编号: AD1023

产品规格: 200ul,2x10^9 PFU/ml


  

  • 产品详细介绍
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  • (AD1023)Ad-mCherry-GFP-LC3 说明书

    产品简介

    重组腺病毒表达mCherry GFP-LC3B融合蛋白( Recombinant adenoviruses expressingmCherry GFP LC3B fusion protein, Ad mCherry-GFP-LC3B),可用于感染细胞或组织后进行细胞自噬流(autophagic flux) 的检测。感染后能够在靶细胞中有效表达红色荧光蛋白(mCherry)、绿色荧光蛋白(GFP)和LC3B的融合蛋白,呈现红色和绿色荧光。

    自噬体与溶酶体融合后,溶酶体内的酸性环境会导致GFP荧光淬灭,而mCherry在酸性环境中也很稳定,仍能发出红色荧光。因此,通常用mCherry GFP-LC3B分析细胞内的自噬流变化情况。Ad mCherry GFP-LC3B腺病毒感染细胞,自噬流畅通情况下,细胞内绿色荧光消失,红色班点仍然存在;自噬流阻断情况下,细胞能同时显示红色和绿色荧光。

    腺病毒感染细胞后为瞬时表达,通常不会与基因组DNA重组,不能用于筛选稳定细胞株。本产品感染体内外细胞后,有效表达时间通常不少于7天,不同细胞和组织的有效表达时间有所不同。感染10-14天后蛋白的表达很可能会大大减弱。

    使用说明:

    1. 感染条件的确定:

    不同种类的细胞感染所需的MOI值是不同的,如果是初次使用腺病毒感染需要通过实验确定最佳的感染条件。

    a. 细胞培养(以6孔板Hela细胞为例,其它培养板或培养皿参考6孔板进行操作):感染前一天在6孔板中以5×10^5/孔接种Hela细胞,每孔加入2ml完全培养液(具体的接种数量由细胞大小和细胞生长速度而定),使第二天病毒感染时细胞密度达到约70%左右。

    b. 按照MOI 分别为2、5、10、20、40,计算所需病毒量,计算方法请参考附录。

    c. 冰上解冻病毒,混匀后备用。

    d. 从细胞培养箱中取出6孔板,在显微镜下确定每孔的细胞均生长良好.分别加入特定MOI值的病毒液,同时设置未加入病毒的细胞孔作为对照组。对于培养液体积比较小的多孔板,例如96孔板和48孔板,也可以先把病毒用培养液稀释至所需的MOI值后再加入。

    e. 感染后约12h,除去含有病毒的培养液,每孔加入2ml新鲜的完全培养液,继续培养24h后观察细胞生长状况及荧光蛋白表达情况,以不显著影响细胞生长、荧光较强且感染效率便于荧光观察的MOI值为最佳条件。

    2. 感染细胞、荧光观察

    根据步骤1获得的最佳MOI进行感染实验,在荧光显微镜下观察LC3B的荧光变化情况。

  • 组分说明

    本产品的滴度≥2×10^9 pfu/ml。如果按照20 MOI感染6孔板的细胞,每孔50万细胞计算,200ul

    本产品共可以感染40个孔;如果按照20 MOI感染24孔板的细胞,每孔10万细胞计算,200ul

    本产品共可以感染200个孔。如果MOI值提高,则相应可以感染的孔数会减少;如果MOI值降低,则相应可以感染的孔数会增加。

    保存条件

    -80℃,一年有效;-20℃,1-2个月内有效

  • LC3B简介

    LC3B被认为是细胞自噬中的标志性蛋白。LC3B是一个具有125个氨基酸残基的蛋白,在蛋白合成后,被Atg4切割而失去了C端的22个氨基酸蛋白,从而暴露出C端的甘氨酸,人们把它命名为胞质形式的LC3B I。在细胞自噬的过程中,其C端暴露的甘氨酸经过一个类似泛素化的过程,以ATG7为E1样激活酶(E1-like activating enzyme), 以ATG3为E2样连接酶(E2-like conjugation enzyme),以Atg12-Atg5-Atg16复合物为E3样连接酶(E3-like ligase),在C端甘氨酸上共价连接上磷脂酰乙醇胺(phosphatidylethanolamine,PE)而成为LC3B-PE即LC3B II。与胞质定位的LC3B I不同,LC3B II定位于自噬体(autophagosome)的内膜和外膜上。自噬体与溶酶体融合后,自噬体外膜上的LC3B II被Atg4切割,而自噬体内膜上的LC3B II则被溶酶体内的蛋白酶所降解。尽管LC3B II比LC3B I的分子量要大,但由于其极强的疏水性,在SDS-PAGE电泳时,LC3B II比LC3B I迁移得更快,其表观分子量分别为14kD和16kD。

     

    附录

    病毒MOI的计算
    MOI (Multiplicity of Infection)定义:病毒感染细胞时,病毒数量与细胞数量的比值。
    Pfu (Plaque forming units)定义:具有生物活性的病毒颗粒数量。
    可以根据如下公式计算所需pfu:
    所需pfu=细胞数量×MOI
    例如,需要向1×10^5细胞中加入20 MOI的病毒,即所需pfu=(1×10 ^5cells)×(20 MOI)=2×10 ^6pfu。若病毒母液滴度为1×10^9pfu/ml,则细胞培养液中应加入(2×10^6pfu)/(1×10p^9fu/ml)=0.002ml病毒母液,即2μl病毒母液。